大肠杆菌化学感受态细胞 表达分析 大肠杆菌OverExpress C43（DE3）菌株经特殊工艺制作所得的感受态细胞，可用于DNA的热击转化。经pUC19质粒检测转化效率可达5×108 cfu/μg DNA。且在-80℃能稳定保存几个月转化效率不发生改变。
OverExpress C43(DE3)；C43(DE3) pLysS；BL21 (DE3)；OverExpress C41(DE3)；表达感受态细胞；毒性蛋白表达；pET表达载体；
| 货号 |
产品名称 |
规格 |
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| MF2342-1000UL |
OverExpress C43(DE3) Chemically Competent Cell 大肠杆菌化学感受态细胞 |
10×100μl |
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| MF2342-5000UL |
OverExpress C43(DE3) Chemically Competent Cell 大肠杆菌化学感受态细胞 |
50×100μl |
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OverExpress C41(DE3)、C41(DE3) pLysS、C43(DE3)和C43(DE3) pLysS都是大肠杆菌（E. Coli）菌株，有效表达不同物种有机生物体包括细菌、酵母菌、植物、病毒和哺乳动物来源的毒性蛋白。
OverExpress C43(DE3)菌株来源于OverExpress C41(DE3)菌株，通过筛选OverExpress C41(DE3)对另一个不同毒性蛋白的抗性菌株而获得。OverExpress C41(DE3)来源于BL21(DE3)，此菌株含一个突变，能降低T7 RNA聚合酶（T7 RNAP）的水平，从而预防许多重组毒性蛋白过表达引起的细胞死亡。OverExpress C43(DE3)菌与OverExpress C41(DE3)相比，至少携带另一个不同突变，使其获得更广泛更高的毒性蛋白表达能力。
OverExpress C43(DE3)菌株含DE3区，表明该菌株染色体上整合λ噬菌体DE3溶原体（其上携带lacUV5启动子调控的T7 RNA聚合酶基因），适用于靶基因克隆进入T7启动子表达载体比如pET系列的蛋白生产。
OverExpress C43(DE3)菌株基因型：F– ompT hsdSB (rB– mB–) gal dcm (DE3)
产品描述
本品是大肠杆菌OverExpress C43(DE3)菌株经特殊工艺制作所得的感受态细胞，可用于DNA的热击转化。经pUC19质粒检测转化效率可达5×108 cfu/μg DNA。且在-80℃能稳定保存几个月转化效率不发生改变。
产品包装
| 组分编号 |
组分名 |
货号（规格）
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| MF2342-1000UL |
MF2342–5000UL |
| MF2342-A |
OverExpress C43(DE3) Competent Cell |
10×100μl |
50×100μl |
| MF2342-B |
Control Plasmid puC19, 10pg/μl |
10μl |
10μl |
注意事项
1） 感受态细胞必须用干冰运输。感受态细胞应在-80℃保存，不可反复冻融且放置时间过长，否则会减低感受态细胞的转化效率。
2） hao在冰上融化感受态细胞，不可在冰上放置时间过长，长时间存放会降低转化效率。
3） 进行转化操作时，需在相应温度及无菌条件下进行。
4） 为防止转化实验不成功，可保留部分连接反应液以重新转化，将损失降到低。
5） 产品包装内含质粒pUC19 DNA(10pg/μl)，供对照实验用。
6） 转化高浓度的质粒可相应减少终用于涂板的菌量。
7） 诱导时，IPTG浓度范围可选：0.1~2mM。
8） 为了得到足量的蛋白，需就加诱导时间、温度、IPTG浓度进行优化。
9） 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
使用方法【所有操作均在无菌条件的标准下进行】
1） 从-80℃冰箱取出取感受态细胞，迅速置于冰浴中，5min后待菌块融化，加入目的DNA（质粒或连接产物），用手轻弹管底轻轻混匀（避免用枪吸打），冰浴静置25min。
2） 42℃水浴热激45s，迅速将离心管转移到冰浴中，冰上静置2min。此过程不要摇动离心管。
3） 向每个离心管中加700 μl无菌的2YT或LB培养基（不含抗生素），混匀后置于37℃ 摇床，200 rpm振荡培养60min，目的使质粒上相关的抗性标记基因表达，使菌体复苏。
4） 低速离心收菌（比如5000rpm，1min），留取100μl左右上清，用枪轻轻吹打重悬菌块，之后加到筛选抗生素的2YT或LB固体琼脂培养基上，用无菌的涂布棒将细胞均匀涂开，将平板置于室温（或37℃）直至液体被吸收，倒置培养，37℃培养过夜。
【注意】：
a）涂布用量可根据具体实验调整。若转化的DNA总量较多，可不用离心，直接取少量转化产物涂布平板；反之，若转化的DNA总量较少，则通过离心（5000 rpm，1min）后吸除部分培养液，悬浮菌体后将其涂布于一个平板中。
b）新制备的固体培养基不易涂干，可将平板正置于37℃直至液体被吸收后再倒置培养。
c）涂布剩余的菌液可置于4℃保存，如果次日的转化菌落数过少，可以将剩下的菌液再涂布新培养基进行培养。
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| 货号 |
名称 |
规格 |
| MF2331-1000UL |
BL21 (DE3) Competent Cell 大肠杆菌感受态细胞 |
10×100μl |
| MF2332-1000UL |
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10×100μl |
| MF2333-1000UL |
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10×100μl |
| MF2341-1000UL |
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10×100μl |
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10×100μl |
| MF2335-1000UL |
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10×100μl |
| MS0021-10G |
Chloramphenicol, USP Grade 氯霉素 |
10g |
| MS0018-10G |
Ampicillin, Sodium Salt 氨苄青霉素钠 |
10g |
| MS0017-5G |
Carbenicillin, Disodium Salt 羧苄青霉素二钠盐 |
5g |
| MS0019-10G |
Kanamycin Sulfate 硫酸卡那霉素 |
10g |
| MS0014-1G |
Rifampicin, USP Grade 利福平 |
1g |
| MF2002-1G |
IPTG 异丙基-β-D-硫代半乳糖苷 |
1g |
附录I 蛋白诱导步骤（仅作参考）
1）从新鲜涂布平板上挑取一单克隆，转移到含相应抗生素的5ml LB液体培养基内。
2）37℃摇菌培养过液。为了小化诱导前目的蛋白的小化表达，添加葡萄糖（终浓度为0.2% w/v）到生长培养基内。
3）将步骤2）中过夜培养的菌液吸取0.5ml接种到含相应抗生素的50ml LB液体培养基内。
4）37℃摇菌培养直至OD600达到0.6~0.8。
5）加入IPTG使其终浓度为1mM。目的蛋白的加诱导时间可能在2~16h，依蛋白而异。
6）37℃培养3~4h。为了确定目的蛋白的加诱导时间，建议作一个时间周期优化实验，范围从2~16h。
7）将培养物冰浴10min。4℃，5,000 x g离心10min收集菌株。
8）吸掉上清，将沉淀保存在-20℃（也能保存在更低的温度）。
IPTG母液（1M）配制
称量2.38g IPTG（Mw: 238.30）溶于适量去离子水，充分溶解后，调整终体积到10ml，并过滤除菌，即得到1M ITPG母液。
大肠杆菌化学感受态细胞 表达分析
大肠杆菌化学感受态细胞 表达分析
