维生素B1测试盒 可见分光光度法

维生素B1测试盒 可见分光光度法  正式测定务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
规格:100管/48样,100管/96样 ;  50管/24样,50管/48样
测定方法:可见分光光度法,微量法

需自备的仪器和用品
紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制
试剂一:液体100mL×1瓶,-20℃保存;
试剂二:液体20mL×1瓶,-20℃保存;
试剂三:液体1.5mL×1瓶,-20℃保存;
试剂四:液体25mL×1瓶,-20℃保存;
试剂五:液体1mL×1支,-20℃保存;
试剂六:粉剂×1支,-20℃保存,用时加入2mL蒸馏水;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
工作液的配制:临用将试剂五转移到试剂四中混合溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

样本的处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
① 准确称取0.1g组织或收集500万细胞,加入1mL试剂一和10uL 试剂三,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
② 将匀浆600g,4℃离心5min。
③ 弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心10min。
④ 上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅰ(此步可选做)。
⑤ 步骤④中的沉淀即为线粒体,加入200uL试剂二和2uL 试剂三,超声波破碎(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10,重复30次),用于复合体Ⅰ酶活性测定。

测定步骤:
1、 分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
2、 样本测定

(1)工作液于37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)孵育5min。
(2)在微量石英比色皿或96孔板中加入10μL样本、200μL工作液和15μL试剂六,混匀,记录340nm处初始吸光值A1和 2min后的吸光值A2,计算ΔA=A1-A2。
复合体Ⅰ活力单位的计算
a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下:

(1)按蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min /mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T=1808×ΔA÷Cpr

此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

(2) 按样本鲜重计算
单位的定义:每g组织每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=365×ΔA÷W

(3) 按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=0.73×ΔA
V反总:反应体系总体积,2.25×10-4 L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;V样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,2 min;W:样本质量,g;500:细胞或细菌总数,500万。
b.使用96孔板测定的计算公式如下:

(1)按蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T=3616×ΔA÷Cpr
此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

(2) 按样本鲜重计算
单位的定义:每g组织每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
 复合体Ⅰ活力(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=730×ΔA÷W

(3) 按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=1.46×ΔA
V反总:反应体系总体积,2.25×10-4 L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cm;d:96孔板光径,0.5cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;V样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,2 min;W:样本质量,g;500:细胞或细菌总数,500万。

本产品仅用于科学研究或者工业应用等非医疗目的,不可用于人类或动物的临床诊断或治疗,非药用,非食用。

原创作者:上海生物科技有限公司

维生素E测试盒 可见分光光度法

维生素E测试盒 可见分光光度法   正式测定务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
规格:100管/48样,100管/96样 ;  50管/24样,50管/48样
测定方法:可见分光光度法,微量法

需自备的仪器和用品
紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制
试剂一:液体100mL×1瓶,-20℃保存;
试剂二:液体20mL×1瓶,-20℃保存;
试剂三:液体1.5mL×1瓶,-20℃保存;
试剂四:液体25mL×1瓶,-20℃保存;
试剂五:液体1mL×1支,-20℃保存;
试剂六:粉剂×1支,-20℃保存,用时加入2mL蒸馏水;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
工作液的配制:临用将试剂五转移到试剂四中混合溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

样本的处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
① 准确称取0.1g组织或收集500万细胞,加入1mL试剂一和10uL 试剂三,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
② 将匀浆600g,4℃离心5min。
③ 弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心10min。
④ 上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅰ(此步可选做)。
⑤ 步骤④中的沉淀即为线粒体,加入200uL试剂二和2uL 试剂三,超声波破碎(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10,重复30次),用于复合体Ⅰ酶活性测定。

测定步骤:
1、 分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
2、 样本测定

(1)工作液于37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)孵育5min。
(2)在微量石英比色皿或96孔板中加入10μL样本、200μL工作液和15μL试剂六,混匀,记录340nm处初始吸光值A1和 2min后的吸光值A2,计算ΔA=A1-A2。
复合体Ⅰ活力单位的计算
a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下:

(1)按蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min /mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T=1808×ΔA÷Cpr

此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

(2) 按样本鲜重计算
单位的定义:每g组织每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=365×ΔA÷W

(3) 按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=0.73×ΔA
V反总:反应体系总体积,2.25×10-4 L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;V样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,2 min;W:样本质量,g;500:细胞或细菌总数,500万。
b.使用96孔板测定的计算公式如下:

(1)按蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T=3616×ΔA÷Cpr
此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

(2) 按样本鲜重计算
单位的定义:每g组织每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
 复合体Ⅰ活力(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=730×ΔA÷W

(3) 按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活力(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=1.46×ΔA
V反总:反应体系总体积,2.25×10-4 L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cm;d:96孔板光径,0.5cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;V样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,2 min;W:样本质量,g;500:细胞或细菌总数,500万。

本产品仅用于科学研究或者工业应用等非医疗目的,不可用于人类或动物的临床诊断或治疗,非药用,非食用。

原创作者:上海生物科技有限公司

乳酸脱氢酶(LDH)测试盒 可见分光光度法

产品名称:乳酸脱氢酶(LDH)测试盒 可见分光光度法
测试方法:可见分光光度法
规格:50管/24样

注意:实验之建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

产品说明:
LDH(EC 1.1.1.27)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是糖酵解途径的末端酶,催化丙酮酸与乳酸之间的可逆反应,伴随着NAD+/NADH之间互变。
LDH催化NAD+氧化乳酸生成丙酮酸,丙酮酸进一步与2,4-作用生成腙,在碱性溶液中显棕红色,颜色深浅与丙酮酸浓度成正比。

自备仪器和用品:

可见分光光度计、恒温水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 细菌、细胞或组织样本的制备:
细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为500~10001 的比例(建议500 万细菌或细胞加入1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%200W,超声3s,间隔10s,重复30 次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)15~10 的比例(建议称取约0.1g 组织,加入1mL 提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2. 血清(浆)样本:直接检测。

二、操作步骤:
1、分光光度计预热30min 以上,调节波长至450nm,蒸馏水调零。
2、标准品的配制:取100μL 标准液,用蒸馏水倍比稀释至10.50.250.1250μmol/mL,用210.50.250.1250μmol/mL 标准液做标准曲线。
3、样本测定

试剂名称(μL 测定管 对照管 标准管
待测样本 50 50
标准液 50
试剂一 250 250 250
试剂二 50
蒸馏水 50 50
充分混匀,37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)准确水浴15min
试剂三 250 250 250
充分混匀,37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴15min
试剂四 750 750 750

充分混匀,室温静置3min450nm 下测定吸光度,样本计算ΔA=A 测定管-A 对照管。每个测定管需要设一个对照管。

三、LDH 活力单位计算:

1. 标准曲线的绘制:根据标准管测定值和浓度做标准曲线,y 为标准品浓度,μmol/mLx 为对吸光度(减去浓度为0 的标准管的OD 值)。
2. 计算样本丙酮酸的含量,即将ΔA 带入回归方程中(x),计算y 值(μmol/mL)。
3. 血清(浆)LDH 活力的计算
单位的定义:每mL 血清(浆)每分钟催化产生1nmol 丙酮酸定义为一个酶活力单位。
LDH(U/mL=y×V ÷V ÷T×103=66.7×y
4. 细胞、细菌和组织中LDH 活力的计算
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每mg 组织蛋白每分钟催化产生1 nmol 丙酮酸定义为一个酶活力单位。
LDH(U/mg prot= y×V ÷Cpr×V 样)÷T×103=66.7×y÷Cpr
(2)按样本质量计算:
单位的定义:每g 组织每分钟催化产生1nmol 丙酮酸定义为一个酶活力单位。
LDH(U/g 质量)= y×V ÷W÷V 样总×V 样)÷T×103=66.67×y÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每1 万个细菌或细胞每分钟催化产生1nmol 丙酮酸定义为一个酶活力单位。

 

LDH(U/104 cell)= y×V ÷500÷V 样总×V 样)÷T×103=0.133×y
V 样:反应体系中加入的样本体积,50μL=0.05mLV 样总:加入的提取液体积,1mLT:反应时间,15minCpr:蛋白质浓度,mg/mLW:样本质量,g500:细胞或细菌总数,500 万;103:单位换算系数,1μmol/mL=103nmol/mL。

本产品仅用于科学研究或者工业应用等非医疗目的,不可用于人类或动物的临床诊断或治疗,非药用,非食用。

原创作者:上海生物科技有限公司